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2×SYBR qPCR MasterMix(Universal)
● 產(chǎn)品包裝:
組成 |
RTQ3101-02 (可做40次50 μl反應(yīng)) |
RTQ3101-03 (可做200次50 μl反應(yīng)) |
RTQ3101-04 (可做1000次50 μl反應(yīng)) |
長期貯存 |
2×SYBR qPCR MasterMix |
1ml |
5×1ml |
25×1ml |
-20℃ |
RNase-free water |
1 ml |
5×1 ml |
25×1 ml |
-20℃ |
注:以50μl qPCR反應(yīng)體系為例,每次使用25 μl 2×MasterMix,1 ml可做40次 50μl qPCR反應(yīng)。
● 儲存條件: -20℃避光保存;經(jīng)常使用時,一旦融化后請4℃貯存,4℃保存至少3個月;盡量避免反復(fù)凍融。
● 產(chǎn)品簡介:
本制品是采用SYBR® Green I嵌合熒光法進(jìn)行Real Time PCR的專用試劑。已經(jīng)將 Hot-Start DNA聚合酶、dNTP、特殊穩(wěn)定劑、優(yōu)化的反應(yīng)緩沖液和 SYBR® Green I 等試劑預(yù)混成一種適合 Real Time PCR反應(yīng)檢測用 2×MasterMix試劑,具有靈敏度高、特異性強(qiáng)、穩(wěn)定性好等特點。
本制品使用新型抗體修飾的 HotStart Taq DNA聚合酶,并結(jié)合精心優(yōu)化的反應(yīng) Buffer,從而有效抑制低溫下的非特異性擴(kuò)增,提高反應(yīng)特異性和擴(kuò)增效率,能夠在更寬廣的范圍內(nèi)進(jìn)行準(zhǔn)確定量。使用時只需加入模板、引物和水,便可在寬廣的定量區(qū)域內(nèi)得到良好的標(biāo)準(zhǔn)曲線,對目的基因進(jìn)行準(zhǔn)確定量檢測,重復(fù)性好,可信度高。
預(yù)混液中含有優(yōu)化的校正染料,與一系列qPCR設(shè)備兼容,包括需要ROX校正的儀器,實驗操作過程中不需要額外添加校準(zhǔn)染料來校正儀器。
● 注意事項
1. 本制品中已經(jīng)含有優(yōu)化的校正染料,客戶無需再添加校正染料,可以直接使用。
2. 本制品含SYBR® Green I,強(qiáng)光下易分解,使用時避免長時間強(qiáng)光照射本制品。
3. 建議在冰上配制qPCR反應(yīng)液,再放入qPCR儀器中擴(kuò)增??梢蕴岣邤U(kuò)增特異性,減少背景。
4.-20℃下保存時間較長,有微量沉淀產(chǎn)生,充分混勻后不影響使用。本制品已經(jīng)優(yōu)化了反應(yīng)緩沖液中的Mg2+濃度,無需再調(diào)節(jié)Mg2+濃度。
5. 模板DNA:用本產(chǎn)品,cDNA、基因組DNA、質(zhì)粒DNA、病毒DNA等都可作為模板。在添加DNA模板時請注意模板量對PCR擴(kuò)增的影響。本產(chǎn)品建議添加量為:cDNA添加量不應(yīng)超過總反應(yīng)體系的10%;基因組DNA為模板時,為避免在高濃度區(qū)域出現(xiàn)線性差的情況,請注意添加量小于500 ng;病毒DNA也可作為PCR模板,添加時請以300 ng為上限;由于質(zhì)粒DNA濃度和拷貝數(shù)很高,在添加PCR模板之前最好進(jìn)行稀釋梯度試驗,以便確定合適的質(zhì)粒DNA拷貝數(shù)。
6. 引物:
建議每條引物工作濃度200 nM-800 nM;為得到高靈敏度定量性的數(shù)據(jù),引物的設(shè)計非常重要。以下列舉了設(shè)計引物時需注意的一般事項。
a) 引物長度請設(shè)定為18bp~30bp、GC含量為40%~65%;
b) 擴(kuò)增片段一般小于300bp,請盡量設(shè)定在80bp~150bp。過長的片段容易導(dǎo)致擴(kuò)增效率降低;
c) 如設(shè)計mRNA為目的片段的引物,設(shè)計應(yīng)盡量橫跨內(nèi)含子,以防止基因組DNA的擴(kuò)增而引起假陽性;
d) 請盡量選擇Tm為65℃~67℃;
e) A、G、C、T整體分布盡量均勻。不要有部分的GC rich或AT rich(特別是3'端)。避開T/C(Polypyrimidine)或A/G(Polypurine)的連續(xù)結(jié)構(gòu);
f) 避開引物內(nèi)部或兩條引物之間有3個堿基以上的互補(bǔ)序列。二條引物間的3'末端避開有2個堿基以上的互補(bǔ)序列;
g) 引物設(shè)計完成后要使用BLAST檢索確認(rèn)引物的特異性。
此外,引物的純化純度對反應(yīng)特異性有很大的影響。經(jīng)過一般純化、純度較低的引物熒光強(qiáng)度散亂,容易產(chǎn)生非特異性產(chǎn)物,致使熔解曲線出現(xiàn)雜峰。請盡可能使用HPLC級別純化,至少要用經(jīng)Cartridge(OPC)級別以上純化的引物。
7. 對照設(shè)計:
1)No template control(NTC):在qPCR反應(yīng)體系中僅僅缺少模板。用以檢測有無二聚體和試劑有無污染。
2)Reverse Transcripase control:用以評估逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)中有無基因組DNA的污染。在逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)中僅僅不含有逆轉(zhuǎn)錄酶。
● 使用說明:
1. 冰浴中徹底融化2×qMasterMix,避免渦旋震蕩,以免產(chǎn)生過多氣泡,徹底混勻后快甩離心將溶液收集到管底。
2. 按照下表在制備反應(yīng)體系:
|
50 μl反應(yīng)體系 |
20 μl反應(yīng)體系 |
終濃度 |
2×qPCR MasterMix |
25 μl |
10 μl |
1× |
上游引物 10 μM |
1 μl |
0.4 μl |
0.2 μM |
下游引物 10 μM |
1 μl |
0.4 μl |
0.2 μM |
模板 |
× μl |
x μl |
10pg-100ng |
水 |
補(bǔ)至50 μl |
補(bǔ)至20 μl |
|
3. 快甩離心將反應(yīng)液收集到管底。
4. 檢測片段大于300 bp,qPCR儀上推薦執(zhí)行以下程序(三步法):
步驟 |
溫度 |
時間 |
循環(huán)數(shù) |
初始變性 |
95℃ |
30 sec* |
1 |
變性 |
95℃ |
15 sec |
40 |
退火 |
55-65℃ |
30 sec |
|
延伸 |
72℃ |
30 sec |
|
熔解曲線 |
使用機(jī)器默認(rèn)采集程序 |
檢測片段小于300 bp,qPCR儀上推薦執(zhí)行以下程序(兩步法):
步驟 |
溫度 |
時間 |
循環(huán)數(shù) |
初始變性 |
95℃ |
30 sec* |
1 |
變性 |
95℃ |
15 sec |
40 |
退火和延伸 |
60℃ |
60 sec |
|
熔解曲線 |
使用機(jī)器默認(rèn)采集程序 |
注:由于本MasterMix中的Hot-start DNA聚合酶是經(jīng)過抗體修飾的,初始變性95℃30 sec即可。
● 實驗結(jié)果分析
反應(yīng)結(jié)束后加做融解曲線,以區(qū)分?jǐn)U增產(chǎn)物及引物二聚體。根據(jù)擴(kuò)增曲線和融解解曲線結(jié)果可進(jìn)行PCR定量標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作。
● 常見問題及處理
問題 |
可能原因 |
推薦的解決方法 |
無擴(kuò)增曲線且無擴(kuò)增產(chǎn)物(凝膠電泳) |
反應(yīng)體系中有PCR反應(yīng)抑制劑 |
更換或純化模板DNA。 |
引物設(shè)計不合理 |
重新設(shè)計、合成引物。 |
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逆轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物體積過量 |
減少逆轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物量以不超過反應(yīng)體系的10%。 |
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加樣錯誤或有試劑未加 |
檢查是否加了所有的所需試劑。 |
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引物的降解 |
通過PAGE電泳檢測引物完整性。 |
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退火溫度不正確 |
優(yōu)化退火溫度。 |
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無擴(kuò)增曲線但有擴(kuò)增產(chǎn)物(凝膠電泳) |
qPCR儀設(shè)置不正確 |
檢查dye selction,reference dye是否選擇正確 |
失效的熒光檢測 |
熒光檢測應(yīng)在PCR循環(huán)的退火/延伸階段。 |
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熒光PCR儀問題 |
參考qPCR儀器說明書 |
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陰性對照(NTC)有擴(kuò)增曲線
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反應(yīng)體系中有污染 |
qPCR片段較小,極易造成環(huán)境中氣溶膠污染。如果融解曲線分析,解鏈溫度和目的片段相同,凝膠電泳中NTC中的片段大小和目的片段相同,極有可能是反應(yīng)體系中某一或某些試劑污染所引起的。建議換至沒有污染源的環(huán)境進(jìn)行PCR體系的配制。 |
引物二聚體 |
進(jìn)行溶解曲線分析,如果擴(kuò)增曲線的解鏈溫度小于80℃,凝膠電泳片段大小和目的片度不符。請重新設(shè)計引物。 |
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提高退火溫度3℃。 |
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PCR效率高于110% (斜率>-3.1) |
有非特異性擴(kuò)增 |
溶解曲線分析非特異性擴(kuò)增;優(yōu)化引物設(shè)計 |
PCR擴(kuò)增效率低于90% (斜率<-3.6) |
反應(yīng)體系中有PCR反應(yīng)抑制劑 |
更換或純化模板DNA |
PCR擴(kuò)增條件不合適引起擴(kuò)增效率降低。 |
確認(rèn)引物濃度。注意qPCR Master Mix是否失效。 |
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引物設(shè)計 |
重新設(shè)計引物,避免擴(kuò)增區(qū)域的DNA二級結(jié)構(gòu)。 |
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實時熒光曲線線性不好 |
模板DNA含量較低或過高 |
應(yīng)調(diào)整樣品的DNA濃度。 |
模板DNA中含有抑制PCR擴(kuò)增反應(yīng)的物質(zhì) |
對模板DNA進(jìn)行純化或更換模板。 |
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質(zhì)量不好的逆轉(zhuǎn)錄試劑盒合成的cDNA,逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)液中所含的物質(zhì)可能抑制PCR反應(yīng)。 |
請降低樣品濃度,或?qū)悠芳兓笤龠M(jìn)行反應(yīng)。建議使用品牌質(zhì)量較好的cDNA合成逆轉(zhuǎn)錄試劑盒。 |
CT值高于預(yù)期值 |
加入的模板量太少 |
適當(dāng)增加模板量。 |
樣品被降解 |
檢查樣品的完整性。 |
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引物不合適 |
重新設(shè)計合成引物。 |
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CT值低于預(yù)期值 |
加入了過多的模板 |
減少模板量。 |
PCR產(chǎn)物太長 |
一般采用100-150bp的產(chǎn)物長度,一般不超過500bp |
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CT值的標(biāo)準(zhǔn)差>0.16 |
取樣不準(zhǔn)確 |
每種樣品的反應(yīng)混合液單獨(dú)配制,充分混勻; qPCR之前要離心,管壁不要沾有反應(yīng)液。 |
ΔRn值太小 |
PCR效率太低 |
優(yōu)化PCR反應(yīng)條件。 |
目標(biāo)模板數(shù)太低 |
增加模板量。 |
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擴(kuò)增曲線的熒光信號弱,或擴(kuò)增曲線呈鋸齒狀
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PCR的延伸時間過短即熒光讀取時間不充分,熒光收集不能充分完成。 |
適當(dāng)增加延伸時間。 |
以少于PCR儀器標(biāo)準(zhǔn)條件的反應(yīng)體積進(jìn)行擴(kuò)增,熒光收集量的誤差會增大 |
應(yīng)增加反應(yīng)體積以滿足PCR儀器標(biāo)準(zhǔn)。 |
使用RTQ3101 2×SYBR qPCR MasterMix發(fā)表部分文章列表:
1. [2023IF=6.1] The function of CC-Type Glutaredoxins in salt-induced flower drop in Tomato.
Author: Siqi Ge, Sai Wang, Ruizhen Li, Mingfang Qi, Tao Xu, Lina Cheng, Tianlai Li.
Journal: Plant Physiology and Biochemistry. Accepted Date: 8 April 2025
Institution: College of Horticulture, Shenyang Agricultural University
Paper link:https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2025.109906
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